Örebro universitet
Institutionen för hälsovetenskap
Program: Biomedicinsk analytikerprogrammet Kurs: BMLV C, Examensarbete, BL1701 15 hp Datum: 22/5 2014
Utvärdering av HTLV-I/II ELISA 4.0 (MP
Diagnostics)
Författare: Ylva Mattsson
Handledare: Kerstin Malm, doktorand Sören Andersson, docent Örebro Universitetssjukhus, Laboratoriemedicinska länskliniken,
SAMMANFATTNING
HTLV-1 och 2 är en kronisk virusinfektion som oftast är asymtomatisk. Nya blodgivare och par som utreds för in vitro fertilisering screenas för sjukdomen. Screening sker med EIA-teknik för att sedan konfirmeras med immunoblot eller PCR. Det finns inte många
kommersiella screeningmetoder för HTLV-1 och 2. För att fånga upp alla smittade individer i screeningen och samtidigt utesluta så många friska personer som möjligt behöver en
screeningmetod med hög sensitivitet och specificitet användas. Målet med studien var att utvärdera sensitiviteten och specificiteten hos screeningtestet HTLV-I/II ELISA 4.0 från MP Diagnostics (St. Ingbert, Tyskland). Totalt testades 71 positiva serumprov, ett positivt likvorprov och 443 negativa prover enligt tillverkarnas instruktioner. Testet hade en specificitet på 100 % för både HTLV-1 och 2, och en sensitivitet på 99,5 %. Testets specificitet och sensitivitet är likvärdig med existerande screeningtest.
1
BAKGRUND
Upptäckt
Human T-lymphotropic virus (HTLV) är ett typ C retrovirus som tillhör släktet
Deltaretrovirus [1]. Viruset HTLV-1 isolerades från en patient med T-cellslymfom 1979 [2] men upptäckten publicerades först 1980 [3]. HTLV var det första humana retroviruset som identifierats [2]. Ytterligare en variant av virus upptäcktes 1982 som fick namnet HTLV-2 [4]. År 2005 upptäcktes ytterligare två HTLV-typer, HTLV-3 och 4 [5]. I Sverige screenas nya blodgivare och par som utreds för in vitro fertilisering för HTLV-1 och 2 [1].
Livscykel
HTLV:s viruspartikel består av en RNA-sträng omsluten av en kapsid och ett lipidrikt hölje. När viruset tar sig in i cellen omvandlar enzymet omvänt transkriptas (reverse transcriptase) virus-RNA:t till DNA som sedan inkorporeras i värdcellens DNA (provirus). Därifrån används cellens enzymer till translation av virusproteiner och nya viruspartiklar [6].
Viruset existerar främst som ett provirus inuti lymfocyter och virusnivån i plasma är låg. HTLV-1 infekterar oftast CD4+ T-celler, men kan även infektera CD8+T-celler, endotelceller och fibroblaster [7-9]. HTLV-2 infekterar oftast CD8+ T-celler men det finns studier som visar att de även kan infektera CD4+ T-celler [10]. Spridning av viruset till andra celler sker antingen från cell till cell (viral synaps) eller klonalt när cellen delar på sig [11, 12].
Mellan individer smittar HTLV genom sexuell kontakt, från moder till barn (främst genom amning) och genom blodkontakt [13, 14].
Epidemiologi
HTLV-1 och 2 finns i hela värden. HTLV-1 är vanligt i södra Japan, Sydamerika, sub-sahariska Afrika och i delar av Mellanöstern [15]. HTLV-2 är vanligare i Afrika, Nord- och Sydamerika. HTLV-2 är också vanlig bland intravenösa missbrukare i Europa och USA [14]. I en studie som gjordes 2012 [16] var prevalensen av HTLV i Sverige var 0,003 % hos nya blodgivare, men i en population av intravenösa missbrukare var prevalensen 3,2 %. Hos smittade intravenösa missbrukare var HTLV-2 vanligast med men i den övriga populationen är det vanligare med HTLV-1.
2 Sjukdomsbild
De flesta bärare av HTLV är asymtomatiska, men en del bärare utvecklar sjukdomar. HTLV-1 kan orsaka adult T-cell leukemi/lymfom (ATLL) och HTLV-associerad Myelopati/Tropisk Spastisk Parapares, HAM/TSP) och bärare har också större risk att drabbas av flera
inflammatoriska sjukdomar [13]. HTLV-2 har inte ett lika tydligt samband med andra sjukdomar men har bl a. associerats till HAM/TSP och inflammation i luftvägarna [14]. Studier över vilka sjukdomar som HTLV-3 och 4 orsakar eller ger större risk för har inte gjorts.
ATLL drabbar främst personer som smittats av HTLV-1 tidigt i livet. Sjukdomen kännetecknas av att infekterade lymfocyter börjar dela sig okontrollerat vilket leder till förstoring av lymfkörtlar, mjälte och lever, hyperkalcemi och hudförändringar. Risken att bärare av HTLV-1 utvecklar sjukdomen är 2-5 %. Risken är högre för de som har smittats tidigt i livet vilket troligen beror på ett mindre effektivt immunförsvar samt att en längre exponeringstid ökar risken för mutationer som leder till malignitet [17].
För personer infekterade med HTLV-1 är risken att drabbas av HAM/TSP är runt 4-5 %. Sjukdomen är vanligare hos kvinnor. Immunförsvarets reaktion mot infekterade T-celler som finns i det centrala nervsystemet resulterar i en kronisk inflammation som skadar neuronen. Förstörelsen av neuronen leder bl.a. till neurologiska problem i den nedre halvan av kroppen som t.ex. benens muskler och urinblåsan [18]. HTLV-2 kan också orsaka HAM/TSP men sjukdomsförloppet tycks generellt sett vara mildare [14].
Immunförsvarets reaktion mot en HTLV-1-infektion är generellt sett starkt med höga titrar av antikroppar [19]. I en studie från 2001 [20] späddes positiva HTLV-prov för att sedan
analyseras med screeningtester. Prover positiva för HTLV-1 kunde spädas med än HTLV-2 positiva prover utan att sensitiviteten sjönk. Detta antyder att individer smittade av HTLV-2 bildar lägre antikroppstitrar än de som är smittade med HTLV-1.Det är okänt hur stor betydelse antikropparna har eftersom viruset främst finns intracellulärt. Immunförsvaret kan inte besegra infektionen, men håller provirusnivån på en jämn nivå, även om nivån kan skilja stort mellan individer. Hur lång tid det tar att bilda antikroppar efter den första infektionen är okänt [19].
3 Diagnos
HTLV diagnostiseras främst med detektion av antikroppar mot HTLV-1/2. Patienter screenas först med enzyme immunoassay-teknik (EIA), och positiva prover konfirmeras med
immunoblot eller Polymerase Chain Reaction (PCR) för att säkerställa diagnosen för att skilja HTLV-1 och 2 från varandra.Det finns inte många kommersiella screeningmetoder för HTLV-1 och 2. För att fånga upp alla smittade individer i screeningen och samtidigt utesluta så många friska personer som möjligt behövs screeningmetoder med hög sensitivitet och specificitet [21].
EIA
Grundmetodiken för enzyme immunoasorbant assay (ELISA) utvecklades 1971 av de svenska forskarna Peter Perlmann och Eva Engvall [22]. Oberoende av varandra utvecklade de
nederländska forskarna Anton Schuurs och Bauke van Weemen en liknade metod samma år som de kallade enzyme immunoassay (EIA) [23].
För att detektera antikroppar med EIA används en brunn klädd med det antigen som de sökta antikropparna är riktade mot. När serum sätts till brunnen fäster de eventuella antikropparna vid antigenet och övrigt material som inte binder in tvättas bort. För att detektera de fästa antikropparna är det vanligast att använda en antikropp riktad mot Fc-delen av den inbundna antikroppen konjugerat med ett enzym (konjugat), men det går också att konjugera enzymet med samma antigen som finns i brunnen. Då fäster antigenet vid de uppfångade
antikropparnas ena Fab-del (se figur 1 under metod). Detta kallas double antigen sandwich ELISA. Vid användandet av ett enzym konjugerat med ett antigen detekteras alla isotyper av antikroppar som finns i provet samtidigt [24]. Denna teknik används i screeningtestet HTLV-I/II ELISA 4.0 från MP Diagnostics (St. Ingbert, Tyskland).
Efter att enzymet bundits till brunnen tillsätts ett substrat som reagerar med det med enzymet vilket leder till en färgförändring i provet som mäts spektrofotometriskt. Färgförändringen är proportionell mot antalet antikroppar i provet [24].
Andra immunologiska metoder
Immunobloter är en vidareutveckling av EIA där antigen fästs på ett proteinabsorberande material som sedan behandlas på samma sätt som brunnarna i ELISA. Med den här tekniken
4 går det att undersöka om en patient har antikroppar mot flera olika epitoper av t.ex. ett virus [24]. Tekniken används i Inno-Lia HTLV I/II Score (Fujirebio Europe, Ghent, Belgien).
Chemiluminescent Mikropartikle Immunoassay (CMIA) är en immunologisk metod som fångar upp antikroppar på samma sätt som i EIA, men istället för ett enzym används ett chemiluminescent ämne i konjugatet. Efter inbindning av konjugatet tillsätts ett ämne som skapar en kemisk reaktion med det chemiluminescenta ämnet. Detta resulterar i en produkt som avger en ljusblixt som mäts. Tekniken används i analysen Architect rHTLV-I/II (Abbott laboratories, Abbott Park, Illinois, USA) [25].
Syfte
Syftet med undersökningen var att utvärdera sensitiviteten och specificiteten för HTLV-I/II ELISA 4.0 från MP Diagnostics för att avgöra om testet är lämpligt till screening av HTLV-1 och 2 i klinisk verksamhet. Testets sensitivitet och specificitet jämförs med de aktuella referensmetoderna.
MATERIAL OCH METOD
ProvmaterialTestet HTLV-I/II ELISA 4.0 från MP Diagnostics utvärderades med 71 serumprover som bedömts som reaktiva i immunobloten Inno-Lia HTLV I/II Score. Av proverna var 35 HTLV-1 positiva, åtta var positiva för HTLV-2, och 28 prover som bedömdes som indeterminanta (prover som inte uppfyllde kraven för att kunna tolkas som positiva eller negativa). Även ett likvorprov som var positivt för HTLV-1 testades. Proverna hade skickats till
Laboratoriemedicinska länskliniken, Universitetssjukhuset Örebro (USÖ) för konformation om HTLV-infektion. USÖ är referenslaboratorium för HTLV-diagnostik i Sverige. Proverna hade förvarats i -20°C till analystillfället.
Som negativa serumprover användes 362 prover från nya blodgivare och 81 kliniska prover från USÖ. De kliniska proverna var främst screeningprover från patienter på fertilitetskliniken på USÖ. Alla negativa prover hade screenats och blivit negativa med Architekt rHTLV-I/II.
Ingen etikprövning behövde göras eftersom proverna redan testats för antikroppar mot HTLV-1 och 2 med andra metoder.
5 Testmetod
Testet HTLV-I/II ELISA 4.0 använder ELISA-brunnar klädda med tre olika starkt antigena rekombinerade proteiner från HTLV-viruset. Konjugatet består av ett tre-fusionerat
rekombinerat protein inmärkt med horseradish peroxidase (HRP) och som substrat används 3,3’,5,5’-Tetramethylbenzidine. Alla nödvändiga reagenser förutom destillerat vatten fanns i testet. Testet är avsett till screening och positiva resultat måste konfirmeras med andra metoder.
Tillvägagångssätt
Metodens tillvägagångssätt följde tillverkarnas instruktioner. Till analysen krävdes 50 µl patientserum. Tvättlösning och konjugatet späddes enligt anvisningar och brunnarna inkuberades med konjugat och patientserum i 60 minuter i 36 °C. Därefter tvättades brunnarna sex gånger med 500 µl tvättvätska och substratet sattes till. Efter ytterligare 30 minuters inkubation i mörker vid 36 °C stoppades reaktionen med stopplösningen och brunnarnas absorbansvärde lästes av med spektrofotometern Tecan Sunrise (Tecan, Gröding, Österrike) vid 450 nm med värdet vid 620 nm som baslinje. I varje provomgång fanns det med en blank, tre negativa och tre positiva kontroller som medföljde testet. Metodiken finns beskriven i figur 1.
Figur 1. Bilden visar reaktionsprincipen som används i testet HTLV-I/II ELISA 4.0. Källa: http://www.bio-connectdiagnostics.nl/uploads/pdf/MP-HTLV-I-II_ELISA_4.0_567.pdf
Resultattolkning
För att resultatet från analysomgången skulle godkännas skulle blankprovet och alla negativa kontroller få ett absorbansvärde ≤100 och de positiva kontrollerna skulle ha ett värde ≥0,600.
6 I varje analysomgång beräknades cut-off värdet utifrån de negativa kontrollernas medelvärde adderat med 0,25. Provernas absorbansvärde dividerades med cut-off värdet
(provabsorbans/cut-off) och ett värde ≥1 tolkades som reaktivt.
Enligt testets instruktioner skulle alla reaktiva prover testas och bli reaktiva igen för att provet ska anses vara positivt för antikroppar mot HTLV-1 eller 2. Eftersom alla prover redan testats med andra metoder upprepades bara testet på de prover som fick oväntat resultat. De prover som var negativa med Architekt rHTLV-I/II och positiva med HTLV-I/II ELISA 4.0 testades med Inno-Lia HTLV I/II Score.
Inno-Lia
Inno-Lia HTLV I/II Score är ett immunoblottest som använder get-anti-human IgG och alkaliskt fosfatas som konjugat och 5-bromo-4-chloro-3-indolyl som substrat. Teststripsen har band av antigenen gag p19I/II, gag p24 I/II, env gp46I/II, env gp21 I/II, gag p19-I, env gp46-I och env gp46-II. Stripsen har också tre band med IgG som positiv kontroller, och ett med streptavidin som negativ kontroll.
Analysen av de prover som blivit positiva i HTLV-I/II ELISA 4.0 följde tillverkarnas instruktioner. Till analysen användes 10 µl patientserum. Tvättvätskan späddes enligt
anvisningar. Alla inkubation- och tvättsteg gjordes i rumstemperatur på ett skakbordet Vibrax VXR (IKA, Staufen, Tyskland) i 200 rpm. Teststripsen inkuberades med patientserum och spädningsvätska i 16 h. Stripsen tvättades sedan tre gånger i fem minuter. Konjugat tillsattes och stripsen inkuberades i 30 min, för att sedan tvättas 3 gånger i fem minuter. Substratet tillsattes och stripsen inkuberades i 30 min. Därefter sögs substratlösningen bort och stopplösningen tillsattes och inkuberades i 10 min. Stripsen scannades av Perfection V400 photo (EPSON, Jakarta, Indonesien) och tolkades med programmet LiRASTM (Fujirebio Europe, Ghent, Belgien).
För att testet ska godkännas måste det finnas en reaktion mot alla kontrollband på stripsen och den negativa kontrollen ska reagera på kontrollbanden och den positiva kontrollen ska reagera mot banden p19 I/II, p24 I/II, gp46 I/II, gp21 I/II, och gp46-I. För att ett prov ska bedömas som positivt måste det finnas en reaktion mot minst två band inklusive gp21 eller mot tre band eller fler.
7 Statistik bedömning
Sensitiviteten och specificiteten räknades från de kända positiva och negativa proverna och konfidensintervallet bestämdes. Variationskoefficienten för hur proverna varierade mellan körningarna beräknades med kontrollerna.
RESULTAT
Sensitivitet och specificitet
Alla 43 serumprover som bedömts som positiva med Inno-Lia HTLV I/II Score blev positiva i den första analysomgången med HTLV-I/II ELISA 4.0, vilket ger en sensitivitet på 100 % för både HTLV-1 och 2. Även likvorprovet blev positivt. Av de indeterminanta proverna blev 13 av 28 positiva vilket motsvarar 46 %. Konfidensintervall 95 % var 89,2-100 för HTLV-1, och 53,9-100 för HTLV-2. Se tabell 1 för alla reaktiva provers resultat.
Av de 443 negativa proverna som testades var tre prover initialt reaktiva men när testet upprepades blev ett av proverna negativt och tolkas som negativ enligt testets kriterium. De två andra proverna var fortsatt reaktiva och har enligt testet antikroppar mot HTLV-1 eller 2. Proverna analyserades med Inno-Lia HTLV-I/II Score och blev negativa. Totalt gav detta en specificitet på 99,5 % (Konfidensintervall 95 % var 98,4-100). Se tabell 2 för detaljer.
Tabell nr 1. Detektion av antikroppar i reaktiva prov. Antal prover som blev positiva jämfört med antalet prover som testades inom parantes.
Typ av prov
Antal prov Sensitivitet % (n) Konfidensintervall 95 % HTLV-1 serum 34 100 (34/34) 89,2-100 HTLV-2 serum 8 100 (8/8) 53,9-100 HTLV-1 likvor 1 100 (1/1) * Indeterminanta 28 # (13/28) #
*Konfidensintervallet anges ej eftersom det bara är ett prov.
#Sensitivitet och konfidensintervall 95 % är ej angett eftersom det inte är känt om de verkligen är positiva eller negativa för HTLV.
8 Tabell 2. De negativa provernas resultat vid den första analysomgången och efter upprepning av testet. Prover från 362 nya blodgivare och 81 kliniska prover analyserades.
Initialt Repeterat Typ av prov Specificitet % (n) Konfidensintervall 95 % Specificitet % (n) Konfidensintervall 95 % Blodgivare 99,7 (361/362) 98,5-100 100(362/362) 99,0-100 Kliniska 97,5 (79/81) 99,3 (440/443) 91,1-99,7 97,5 (79*/81) 91,1-99,7 Totalt 98,0-99,9 99,5 (441/443) 98,4-100
*De två positiva proverna konfirmerades som falskt positiva med Inno-Lia HTLV-I/II Score.
Fördelning av absorbansen
De flesta av de positiva proverna (92 %) gav ett absorbansvärde som var mer än dubbelt så högt som cut-off värdet. Figur 2 sammanfattar i vilket intervall absorbansvärdena låg för de reaktiva proverna.
Av de negativa proverna var 96 % under 10 % av cut-off värdet. Provabsorbans/cut-off var generellt lägre med HTLV-I/II ELISA 4.0 än vid analysen med Architekt rHTLV-I/II (p<0.05).Figur 3 visar fördelningen av proverna provabsorbans/cut-off från de nya blodgivarna i testen HTLV-I/II ELISA 4.0 och Architekt rHTLV-I/II.
Figur 2. Histogram över fördelning av de reaktiva provernas absorbans/cut-off i HTLV-I/II ELISA 4.0 . Värden ≥1 tolkas som positiva.
0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 An ta l p ro v provabsorbans/cut-off HTLV-1(n=35) HTLV-2(n=8) Indeterminanta(n=28)
9 Figur 3. Histogram över fördelning av de negativa provernas absorbans/cut-off i prover från nya blodgivare med HTLV-I/II ELISA 4.0 och Architekt rHTLV-I/II (n=362). Värden <1 tolkas som negativa.
Cut-off och Kontroller
Cut-off värdet var som lägst 0,266 och som högst 0,272, en skillnad på 2,2 %. Inga av proverna fick ett absorbansvärde som överlappar det intervallet. Den negativa kontrollens medelvärde i alla analyser var 0,019 med en standardavvikelse på 0,002. Den positiva kontrollen hade ett medelvärde på 1,95 med en standardavvikelse på 0,18.
Variationskoefficienten var 10 % för båda kontrollerna(se tabell 3). Ingen analysomgång underkändes. 0 50 100 150 200 250 0 0,06 0,12 0,18 0,24 0,3 0,36 0,42 0,48 0,54 0,6 0,66 0,72 0,78 An ta l p ro ve r Provabsorbans/cut-off HTLV-I/II ELISA 4.0 Architekt rHTLV-I/II
10 Tabell 3. Variation på kontrollerna
Typ av kontroll Medelvärde±SD absorbans CV % Negativ kontroll 0,019±0,002 10,1 Positiv kontroll 1,95±0,18 9,5 SD, standradavvikelse CV, variationskoefficienten
DISKUSSION
SensitivitetAlla HTLV-1 och 2 positiva serumproverna blev positiva i HTLV-I/II ELISA 4.0 vilket ger en sensitivitet på 100 %. Konfidensintervallet blev brett för proverna eftersom få prover har testats. Speciellt HTLV-2 har ett brett intervall och fler prover bör testas för att det ska vara säkert att testet verkligen har 100 % sensivitet. Det är dock värt att notera att de flesta positiva prover gav reaktioner som blev betydligt högre än cut-off värdet, vilket tyder på att testet är effektivt på att fånga upp antikropparna mot HTLV.
Av de indeterminanta proverna blev 54 % negativa. Proverna bedöms som indeterminant om det finns reaktion mot ett eller två av antigenen som används i immunobloten. Troligen uppkommer reaktionen pga. korsreaktioner av antikroppar eftersom studier har visat att prover som är indeterminanta i immunoblot oftast är negativa med PCR [26-28] Att 54 % av proverna blev negativa i det här fallet efter att de fastnat i en annan screeningmetod beror på att antigenen som används i olika tester kan se lite annorlunda ut och på så vis korsreagera med olika antikroppar. HTLV-I/II ELISA 4.0 reagerade inte på en del av de indeterminanta proverna men reagerade istället med två av prover som bedömts som negativa i med Architekt
rHTLV-I/II.
Specificitet
Testet hade en hög specificitet på 99,5 %. Medelparten av de negativa proverna (96 %) låg under 10 % av cut-off värdet vilket gör att det skiljer mycket i absorbansvärderna mellan de positiva och de negativa proverna. Konfidensintervallet blev snävare för de negativa proverna än för de positiva eftersom flera prover har testats, och med så snävat intervall kan man vara säker på att specificiteten stämmer. Proverna hade generellt en lägre provabsorbansen/cut-off i HTLV-I/II ELISA 4.0 än i Archetikt rHTLV-I/II men skillnaden är liten.
11 Kontroller
Gränserna på kontrollerna som avgör om analysomgången är godkänd är väldigt generösa. De negativa kontrollerna får inte överskrida absorbansen 0,100 men medelvärdet i alla körningar var 0,019±0.002 och absorbansvärdet översteg aldrig 0,025. Cut-off värdet låg stabilt med absorbansvärdet 0,27 i alla analysomgångar.
De positiva kontrollerna låg också långt ifrån testets fastställda gränser. Kravet för att analysomgången skulle godkännas var att absorbansen skulle vara över 0,600 men blev 1,95±0,18. Det lägsta enskilda absorbansvärdet var 1,4. Om enbart testets kontroller ska användas bör gränserna skärpas för att ge en bättre kontroll på om något har gått fel under analysen. Egna kontroller kan också användas för att säkerställa kvalitén på analysomgången.
Övriga provmaterial
Testet är designat för serum och plasmaprov. Ett likvorprov testades och blev positivt, vilket visar att det går att detektera antikroppar mot HTLV i likvor, dock kan inte den här
utvärderingen säga om testet är lämpligt till det då enbart ett positivt prov och inga negativa prover har testats.
Tillverkarna säger att det är möjligt att använda testet till diagnostik av HTLV-3 men det har inte utvärderats eftersom det inte fanns tillgång till positiva prover.
Felkällor
Enligt tillverkarna ska brunnarna inkuberas i 37±1 °C. Det värmeskåp som användes höll temperaturen 36 °C och temperaturen kunde sjunka lite när dörren till värmeskåpet öppnades för att sedan snabbt stiga till 36 °C igen. Detta borde inte varit något problem eftersom alla kontrollerna uppfyllde kraven i alla analysomgångar. Det är också värt att notera att
reaktionen med substratet var synlig direkt när substratet tillsattes i de positiva kontrollerna innan plattan ställts in i värmeskåpet vilket visar att temperaturen inte behöver vara 37 °C för att enzymet ska reagera med substratet.
Ett av de negativa proverna blev initialt positivt men sedan negativt. Detta beror troligen på en kontamination från de positiva kontrollerna under analysgången. Eftersom provet blev negativt i omkörningen räknas provet som negativt enligt HTLV-I/II ELISA 4.0 kriterium.
12 Användande
Metoden är lätt att använda och kräver enbart två inkubationssteg och ett tvättsteg eftersom serum och konjugat sätts till samtidigt i brunnarna. Enbart konjugatet och tvättlösningen behövde spädas och tvättlösningen håller sig i två veckor så den behöver inte spädas inför varje analysomgång.
Metoden kräver ett värmeskåp som håller 37 °C, destillerat vatten att späda tvättlösningen med, och en spektrofotometer till avläsningen. Utrustningen finns med största sannolikhet redan finns på ett sjukhuslaboratorium. En analysomgång med 57 prover tog ungefär 2,5 h att genomföra manuellt. Automatiska ELISA- processor kan användas för att undvika manuell hantering och spara arbetstid från personalen.
Andra screeningtester
Tabell 4 visar sensitiviteten och specificiteten hos HTLV-I/II ELISA 4.0 jämfört med andra kommersiellt tillgängliga test utvärderade av Malm et al. 2010 [29] och Andersson et al. 1999 [30]. Testen som finns med är: Architekt rHTLV-I/II , Prism HTLV-I/HTLV-II (Abbott laboratories, Abbott Park, Illinois, USA), Serodia HTLV-1 (Fujirebio, Tokyo, Japan) och Murex HTLV I+II (DiaSorin, Saluggia, Italien). Testerna Serodia HTLV-1 och Murex HTLV I+II utvärderades också av Berini et al. 2008 [31] i Argentina där de fick sämre resultat.
HTLV-I/II ELISA 4.0 har en sensitivitet som är likvärdig med andra kommersiellt tillgängliga tester, men en något sämre specificitet. Utvärderingen av Andersson et al. 1999 använde bara serum från blodgivare som negativa prover och i den typen av provursprung fick även HTLV-I/II ELISA 4.0 100 % specificitet. I den utvärderingen användes 450-500 negativa prover, vilket ger en större säkerhet än i den här undersökningen men det är inte tillräckligt stort för att enskilda falskt positiva prov inte skulle ha betydelse för statistiken.
Skillnaden mellan utvärderingarna 1999 och 2008 kan bero på att Argentina är ett land med högre prevalens av HTLV och det är större risk att de som screenas nyligen har fått
infektionen och inte har bildat tillräckligt höga nivåer av antikroppar för att det ska detekteras i alla test. Detta stöds också av att studien 1999 [30] även utvärderade specificiteten på prover från blodgivare i Guinea-Bissau i Afrika (siffror ej med i tabellen), som har relativt hög
13 prevalens av HTLV. Testerna Murex HTLV I+II och Serodia HTLV-I fick en lägre
specificitet på de proven. De utländska proverna testades inte med Prism HTLV-I/HTLV-II.
Tabell 4. Jämförande av sensitivitet och specificitet hos olika tester avsedda till screening av antikroppar mot HTLV-1 och 2.
Testmetod
Utvärderat på svensk befolkning Utvärderat på argentinsk befolkning
Sensitivitet % Specificitet % Sensitivitet % Specificitet % HTLV-1 HTLV-2 HTLV-1 HTLV-2 HTLV-I/II ELISA 4.0 100 100 99,5 Architekt rHTLV-I/II* 100 100 99,8 Prism HTLV-I/HTLV-II# 100 100 100 Serodia HTLV-I#¤ 100 100 100 98,8 98,2 98,6 Murex HTLV I+II#¤ 100 100 100 98,8 94,6 99,7
*Utvärderades av Malm et al. 2010 [29].
#Utvärderades av Andersson et al. 1999 [30], specificiteten är enbart utvärderad på blodgivare. ¤Utvärderades av Berini et al. 2008 [31].
Sammanfattningsvis visar den här studien att screeningetestet HTLV-I/II ELISA 4.0 fungerar bra att använda praktiskt och att det har en specificitet och sensitivitet som matchar andra screeningmetoder för HTLV-1 och 2 när det gäller serum från blodgivare, men flera prover positiva för HTLV-2 måste testats för att man ska kunna vara säker på att sensitiviteten stämmer.
OMNÄMNADEN
Jag vill tacka mina handledare Sören Andersson och Kerstin Malm för den hjälp och
uppmuntran som jag fått under projektets gång. Jag tackar även all personal på immunologen, USÖ för visat intresse och stöd.
14
REFERENSER
1. Andersson, S.Referensmetodik: Sexuellt överförbara infektioner (STI) [internet]. Solna: Folkhälsomyndigheten; 2009 [citerad 2014-04-27]. Tillgänglig från: http://referensmetodik.folkhalsomyndigheten.se/w/HTLV-infektion
2. Gallo RC. History of the discoveries of the first human retroviruses: HTLV-1 and HTLV-2. Oncogene. 2005 Sep 5;24(39):5926–30.
3. Poiesz BJ, Ruscetti FW, Gazdar AF, Bunn PA, Minna JD, Gallo RC. Detection and isolation of type C retrovirus particles from fresh and cultured lymphocytes of a patient with cutaneous T-cell lymphoma. Proc Natl Acad Sci USA. 1980
Dec;77(12):7415–9.
4. Kalyanaraman VS, Sarngadharan MG, Robert-Guroff M, Miyoshi I, Golde D, Gallo RC. A new subtype of human cell leukemia virus (HTLV-II) associated with a T-cell variant of hairy T-cell leukemia. Science. 1982 Nov 5;218(4572):571–3.
5. Wolfe ND, Heneine W, Carr JK, Garcia AD, Shanmugam V, Tamoufe U, et al. Emergence of unique primate T-lymphotropic viruses among central African bushmeat hunters. Proc Natl Acad Sci USA. 2005 May 31;102(22):7994–9.
6. Ryan, KJ. Ray, CG. Ahmad, N. Drew, WL. Plorde, JJ. Sherris medical microbiology, 5:e upp. Columbus: McGraw-Hill Companies, Inc. 2010
7. Nagai M, Brennan MB, Sakai JA, Mora CA, Jacobson S. CD8(+) T cells are an in vivo reservoir for human T-cell lymphotropic virus type I. Blood. 2001 Sep 15;98(6):1858–61.
8. Ho DD, Rota TR, Hirsch MS. Infection of human endothelial cells by human T-lymphotropic virus type I. Proc Natl Acad Sci USA. 1984 Dec;81(23):7588–90.
15 9. Yoshikura H, Nishida J, Yoshida M, Kitamura Y, Takaku F, Ikeda S. Isolation of
HTLV derived from Japanese adult T-cell leukemia patients in human diploid fibroblast strain IMR90 and the biological characters of the infected cells. Int J Cancer. 1984 Jun 15;33(6):745–9.
10. Lal RB, Owen SM, Rudolph DL, Dawson C, Prince H. In vivo cellular tropism of human T-lymphotropic virus type II is not restricted to CD8+ cells. Virology. 1995 Jul 10;210(2):441–7.
11. Yamamoto N, Okada M, Koyanagi Y, Kannagi M, Hinuma Y. Transformation of human leukocytes by cocultivation with an adult T cell leukemia virus producer cell line. Science. 1982 Aug 20;217(4561):737–9.
12. Etoh K, Tamiya S, Yamaguchi K, Okayama A, Tsubouchi H, Ideta T, et al. Persistent clonal proliferation of human T-lymphotropic virus type I-infected cells in vivo. Cancer Res. 1997 Nov 1;57(21):4862–7.
13. Verdonck K, González E, Van Dooren S, Vandamme A-M, Vanham G, Gotuzzo E. Human T-lymphotropic virus 1: recent knowledge about an ancient infection. Lancet Infect Dis. 2007 Apr;7(4):266–81.
14. Roucoux DF, Murphy EL. The epidemiology and disease outcomes of human T-lymphotropic virus type II. AIDS Rev. 2004 Sep;6(3):144–54.
15. Proietti FA, Carneiro-Proietti ABF, Catalan-Soares BC, Murphy EL. Global epidemiology of HTLV-I infection and associated diseases. Oncogene. 2005 Sep 5;24(39):6058–68.
16. Malm K, Ekermo B, Hillgren K, Britton S, Fredlund H, Andersson S. Prevalence of human T-lymphotropic virus type 1 and 2 infection in Sweden. Scand J Infect Dis. 2012 Nov;44(11):852–9.
17. Qayyum S, Choi JK. Adult T-cell leukemia/lymphoma. Arch Pathol Lab Med. 2014 Feb;138(2):282–6.
16 18. Yamano Y, Sato T. Clinical pathophysiology of human T-lymphotropic virus-type
1-associated myelopathy/tropical spastic paraparesis. Front Microbiol. 2012;3:389. 19. Bangham CRM. The immune control and cell-to-cell spread of human T-lymphotropic
virus type 1. J Gen Virol. 2003 Dec;84(Pt 12):3177–89.
20. Andersson S, Gessain A, Taylor GP. Pooling of samples for seroepidemiological surveillance of human T-cell lymphotropic virus types I and II. Virus Res. 2001 Oct 30;78(1-2):101–6.
21. Andersson, S.Referensmetodik: Sexuellt överförbara infektioner (STI) [internet]. Solna: Folkhälsomyndigheten; 2009 [citerad 2014-04-27]. Tillgänglig från: http://referensmetodik.folkhalsomyndigheten.se/w/HTLV-laboratoriediagnostik
22. Engvall E, Perlmann P. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Quantitative assay of immunoglobulin G. Immunochemistry. 1971 Sep;8(9):871–4.
23. Van Weemen BK, Schuurs AHWM. Immunoassay using antigen-enzyme conjugates. FEBS Lett. 1971 Jun 24;15(3):232–6.
24. Truedsson L. Klinisk immunologi. Lund: Studentlitteratur; 2012.
25. Chaitoff, K. Learning Guide:Immunoassay [Internet].Illinois: Abbott laboratories; 2008 [citerad 2014-05-03] Tillgänglig från:
http://uqu.edu.sa/files2/tiny_mce/plugins/filemanager/files/4180098/solomn/learning_i mmunoassay.pdf
26. Kwok S, Lipka JJ, McKinney N, Kellogg DE, Poiesz B, Foung SK, et al. Low
incidence of HTLV infections in random blood donors with indeterminate western blot patterns. Transfusion. 1990 Aug;30(6):491–4.
27. Vrielink H, Zaaijer HL, Cuypers HT, van der Poel CL, Woerdeman M, Lelie PN, et al. Evaluation of a new HTLV-I/II polymerase chain reaction. Vox Sang.1997;72(3):144– 7.
17 28. Zaaijer HL, Cuypers HT, Dudok de Wit C, Lelie PN. Results of 1-year screening of
donors in The Netherlands for human T-lymphotropic virus (HTLV) type I: significance of Western blot patterns for confirmation of HTLV infection. Transfusion. 1994 Oct;34(10):877–80.
29. Malm K, Kjerstadius T, Andersson S. Evaluation of a new screening assay for HTLV-1 and -2 antibodies for large-scale use. J Med Virol. 20HTLV-10 Sep;82(9):HTLV-1606–HTLV-1HTLV-1.
30. Andersson S, Thorstensson R, Ramirez KG, Krook A, von Sydow M, Dias F, et al. Comparative evaluation of 14 immunoassays for detection of antibodies to the human T-lymphotropic virus types I and II using panels of sera from Sweden and West Africa. Transfusion. 1999 Aug;39(8):845–51.
31. Berini CA, Susana Pascuccio M, Bautista CT, Gendler SA, Eirin ME, Rodriguez C, et al. Comparison of four commercial screening assays for the diagnosis of human T-cell lymphotropic virus types 1 and 2. J Virol Methods. 2008 Feb;147(2):322–7.
